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　　所謂實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù) ，是指在PCR反應體系中加入熒光基團，利用熒光信號積累實(shí)時(shí)監測整個(gè)PCR進(jìn)程，后通過(guò)標準曲線(xiàn)對未知模板進(jìn)行定量分析的方法。以下便是天津本生生物就熒光定量PCR原理的簡(jiǎn)要說(shuō)明，一起來(lái)看下：

　　檢測方法：

　　1.SYBRGreenⅠ法：在PCR反應體系中，加入過(guò)量SYBR熒光染料，SYBR熒光染料特異性地摻入DNA雙鏈后，發(fā)射熒光信號，而不摻入鏈中的SYBR染料分子不會(huì )發(fā)射任何熒光信號，從而保證熒光信號的增加與PCR產(chǎn)物的增加*同步。SYBR定量PCR擴增熒光曲線(xiàn)圖PCR產(chǎn)物熔解曲線(xiàn)圖(單一峰圖表明PCR擴增產(chǎn)物的單一性)

　　2.TaqMan探針?lè )ǎ禾结樛暾麜r(shí)，報告基團發(fā)射的熒光信號被淬滅基團吸收;PCR擴增時(shí)，Taq酶的5’-3’外切酶活性將探針酶切降解，使報告熒光基團和淬滅熒光基團分離，從而熒光監測系統可接收到熒光信號，即每擴增一條DNA鏈，就有一個(gè)熒光分子形成，實(shí)現了熒光信號的累積與PCR產(chǎn)物的形成*同步。

　　1. 熒光閾值(threshold)的設定PCR反應的前15個(gè)循環(huán)的熒光信號作為熒光本底信號，熒光閾值的缺省(默認)設置是3-15個(gè)循環(huán)的熒光信號的標準偏差的10倍，即：threshold = 10*SDcycle 3-152. Ct值與起始模板的關(guān)系每個(gè)模板的Ct值與該模板的起始拷貝數的對數存在線(xiàn)性關(guān)系，公式如下。Ct=-1/lg(1+Ex)*lgX0+lgN/lg(1+Ex)n為擴增反應的循環(huán)次數，X0為初始模板量，Ex為擴增效率，N為熒光擴增信號達到閾值強度時(shí)擴增產(chǎn)物的量。起始拷貝數越多，Ct值越小。利用已知起始拷貝數的標準品可作出標準曲線(xiàn)，其中橫坐標代表起始拷貝數的對數，縱坐標代Ct值。因此，只要獲得未知樣品的Ct值，即可從標準曲線(xiàn)上計算出該樣品的起始拷貝數。

　　實(shí)時(shí)熒光定量PCR所使用的熒光物質(zhì)可分為兩種：

　　1. TaqMan熒光探針：PCR擴增時(shí)在加入一對引物的同時(shí)加入一個(gè)特異性的熒光探針，該探針為一寡核苷酸，兩端分別標記一個(gè)報告熒光基團和一個(gè)淬滅熒光基團。探針完整時(shí)，報告基團發(fā)射的熒光信號被淬滅基團吸收;PCR擴增時(shí)，Taq酶的5'-3'外切酶活性將探針酶切降解，使報告熒光基團和淬滅熒光基團分離，從而熒光監測系統可接收到熒光信號，即每擴增一條DNA鏈，就有一個(gè)熒光分子形成，實(shí)現了熒光信號的累積與PCR產(chǎn)物形成*同步。而新型TaqMan-MGB探針使該技術(shù)既可進(jìn)行基因定量分析，又可分析基因突變(SNP)，有望成為基因診斷和個(gè)體化用藥分析的當選技術(shù)平臺。

　　2. SYBR熒光染料：在PCR反應體系中，加入過(guò)量SYBR熒光染料，SYBR熒光染料非特異性地摻入DNA雙鏈后，發(fā)射熒光信號，而不摻入鏈中的SYBR染料分子不會(huì )發(fā)射任何熒光信號，從而保證熒光信號的增加與PCR產(chǎn)物的增加*同步。SYBR僅與雙鏈DNA進(jìn)行結合，因此可以通過(guò)溶解曲線(xiàn)，確定PCR反應是否特異。

　　3. 分子信標：是一種在5和3末端自身形成一個(gè)8個(gè)堿基左右的發(fā)夾結構的莖環(huán)雙標記寡核苷酸探針，兩端的核酸序列互補配對，導致熒光基團與淬滅基團緊緊靠近，不會(huì )產(chǎn)生熒光。PCR產(chǎn)物生成后，退火過(guò)程中，分子信標中間部分與特定DNA序列配對，熒光基因與淬滅基因分離產(chǎn)生熒光 。

　　1.傳統定量PCR方法簡(jiǎn)介：

　　1)內參照法：在不同的PCR反應管中加入已定量的內標和引物，內標用基因工程方法合成。上游引物用熒光標記，下游引物不標記。在模板擴增的同時(shí)，內標也被擴增。在PCR產(chǎn)物中，由于內標與靶模板的長(cháng)度不同，二者的擴增產(chǎn)物可用電泳或液相分離開(kāi)來(lái)，分別測定其熒光強度，以?xún)葮藶閷φ斩看龣z測模板。

　　2)競爭法：選擇由突變克隆產(chǎn)生的含有一個(gè)新內切位點(diǎn)的外源競爭性模板。在同一反應管中，待測樣品與競爭模板用同一對引物同時(shí)擴增(其中一個(gè)引物為熒光標記)。擴增后用內切酶消化PCR產(chǎn)物，競爭性模板的產(chǎn)物被酶解為兩個(gè)片段，而待測模板不被酶切，可通過(guò)電泳或液相將兩種產(chǎn)物分開(kāi)，分別測定熒光強度，根據已知模板推測未知模板的起始拷貝數。3)PCR-ELISA法：利用digaoxin或生物素等標記引物，擴增產(chǎn)物被固相板上特異的探針所結合，再加入抗digaoxin或生物素酶標抗體-辣根過(guò)氧化物酶結合物，終酶使底物顯色。常規的PCR-ELISA法只是定性實(shí)驗，若加入內標，作出標準曲線(xiàn)，也可實(shí)現定量檢測目的。

　　2.內標在傳統定量中的作用由于傳統定量方法都是終點(diǎn)檢測，即PCR到達平臺期后進(jìn)行檢測，而PCR經(jīng)過(guò)對數期擴增到達平臺期時(shí)，檢測重現性極差。同一個(gè)模板在96孔PCR儀上做96次重復實(shí)驗，所得結果有很大差異，因此無(wú)法直接從終點(diǎn)產(chǎn)物量推算出起始模板量。加入內標后，可部分消除終產(chǎn)物定量所造成的不準確性。但即使如此，傳統的定量方法也都只能算作半定量、粗略定量的方法。

　　3.內標對定量PCR的影響若在待測樣品中加入已知起始拷貝數的內標，則PCR反應變?yōu)殡p重PCR，雙重PCR反應中存在兩種模板之間的干擾和競爭，尤其當兩種模板的起始拷貝數相差比較大時(shí)，這種競爭會(huì )表現得更為顯著(zhù)。但由于待測樣品的起始拷貝數是未知的，所以無(wú)法加入合適數量的已知模板作為內標。也正是這個(gè)原因，傳統定量方法雖然加入內標，但仍然只是一種半定量的方法。 實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)有效地解決了傳統定量只能終點(diǎn)檢測的局限，實(shí)現了每一輪循環(huán)均檢測一次熒光信號的強度，并記錄在電腦軟件之中，通過(guò)對每個(gè)樣品Ct值的計算，根據標準曲線(xiàn)獲得定量結果。

　　因此，實(shí)時(shí)熒光定量PCR無(wú)需內標是建立在兩個(gè)基礎之上的：

　　1)Ct值的重現性PCR循環(huán)在到達Ct值所在的循環(huán)數時(shí)，剛剛進(jìn)入真正的指數擴增期(對數期)，此時(shí)微小誤差尚未放大，因此Ct值的重現性*，即同一模板不同時(shí)間擴增或同一時(shí)間不同管內擴增，得到的Ct值是恒定的。

　　2)Ct值與起始模板的線(xiàn)性關(guān)系由于Ct值與起始模板的對數存在線(xiàn)性關(guān)系，可利用標準曲線(xiàn)對未知樣品進(jìn)行定量測定，因此，實(shí)時(shí)熒光定量PCR是一種采用外標準曲線(xiàn)定量的方法。外標準曲線(xiàn)的定量方法相比內標法是一種準確的、值得信賴(lài)的科學(xué)方法。利用外標準曲線(xiàn)的實(shí)時(shí)熒光定量PCR是迄今為止定量準確，重現性的定量方法，已得到*的*，廣泛用于基因表達研究、轉基因研究，藥物療效考核、病原體檢測等諸多領(lǐng)域。 各級各類(lèi)醫療機構、大學(xué)及研究所、CDC、檢驗檢疫局、獸醫站、食品企業(yè)及乳品廠(chǎng)等。由于qPCR是實(shí)時(shí)定量檢測致病病原體基因核酸，因此它比化學(xué)發(fā)光、時(shí)間分辨、蛋白芯片等免疫學(xué)方法更具獨到優(yōu)
 

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