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BUNSEN本生分享:PCR儀的原理、分類(lèi)、常見(jiàn)問(wèn)題
更新時(shí)間:2023-12-11瀏覽:478次

  BUNSEN本生分享:PCR儀的原理、分類(lèi)、常見(jiàn)問(wèn)題

  一、PCR的基本原理

  聚合酶鏈反應(polymerasechainreaction,PCR)PCR反應過(guò)程與細胞內的DNA復制相似,但PCR的反應體系要簡(jiǎn)單的多,主要包括DNA靶序列、引物、4種單核苷酸dNTP、耐熱DNA聚合酶以及合適的緩沖液體系。

  PCR反應過(guò)程有以下3個(gè)步驟:

  1、變性

  將反應體系混合物加熱到94℃,維持較短時(shí)間(大約15s-30s),使目標DNA雙螺旋的氫鍵斷裂,形成單鏈DNA作為反應模板。

  2、退火

  將反應體系冷卻至特定的溫度(引物的TM值左右或以下),引物與DNA模板的互補區結合,形成模板引物復合物。

  3、延伸

  將反應體系的溫度提高到72℃并維持一段時(shí)間,引物在耐熱聚合酶的作用下,以引物為固定起點(diǎn),以4種單核苷酸(dNTP)作為底物合成新的DNA鏈。

  以上三步作為一個(gè)循環(huán)重復的進(jìn)行,每一循環(huán)的產(chǎn)物作為下一循環(huán)的模板。如此循環(huán)數十次,從而使目的基因得到指數級擴增,達到檢測或獲取基因的目的。

  二、PCR儀的分類(lèi)

  根據DNA擴增的目的和檢測的標準可以將PCR儀分為:普通PCR儀,梯度PCR儀,原位PCR,實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀等幾類(lèi)。

  2.1普通PCR儀

  一般把一次PCR擴增只能運行一個(gè)特定退火溫度的PCR儀,稱(chēng)之為普通PCR儀。

  如果要用它做不同的退火溫度則需要多次運行。主要是用作簡(jiǎn)單的,對目的基因退火溫度的擴增。

  主要應用于科研、教學(xué)、臨床醫學(xué)、檢驗、檢疫等。

  2.2梯度PCR儀

  一次性PCR擴增可以設置一系列不同的退火溫度條件(通常12種溫度梯度)的稱(chēng)之為梯度PCR儀。

  因為被擴增的不同的DNA段其適合的退火溫度不同,通過(guò)設置一系列的梯度退火溫度進(jìn)行擴增,從而一次性PCR擴增就可以篩選出表達量高的適合退火溫度進(jìn)行有效的擴增。主要用于研究未知DNA退火溫度的擴增,這樣既節約時(shí)間,也節約經(jīng)費。

  在不設置梯度的情況下亦可當做普通的PCR用。真正的梯度,是每一排管都有準確的加熱控溫探頭。梯度PCR儀多應用于科研、教學(xué)機構。

  2.3原位PCR儀

  有些品牌的PCR儀具有普通PCR、梯度PCR、原位PCR的功能,通過(guò)替換模塊進(jìn)行多用途開(kāi)展實(shí)驗工作。是用于從細胞內靶DNA的定位分析的細胞內基因擴增儀。如病原基因在細胞的位置或目的基因在細胞內的作用位置等??杀3旨毎蚪M織的完整性,使PCR反應體系滲透到組織和細胞中,在細胞的靶DNA所在的位置進(jìn)行基因擴增。

  不但可以檢測到靶DNA,還能標出靶序列在細胞內的位置。于分子和細胞水平上研究疾病的發(fā)病機理和臨床過(guò)程及病理的轉變有著(zhù)重大的實(shí)用價(jià)值。

  2.4實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀(fluorescencerquantitivepolymerasechainreaction,FQPCR)

  在普通PCR儀設計基礎上增加熒光信號激發(fā)和采集系統和計算機分析處理系統,形成了具有熒光定量PCR功能的儀器。

  其PCR擴增原理和普通PCR擴增原理相同,在PCR擴增時(shí)加入的引物是利用同位素、熒光素等進(jìn)行標記,使用引物和熒光探針同時(shí)與模板特異性結合擴增。擴增的結果通過(guò)熒光信號采集系統實(shí)時(shí)采集信號連接輸送到計算機分析處理系統,得出量化的實(shí)時(shí)結果輸出。

  熒光定量PCR儀有單通道,雙通道和多通道之分。當只用一種熒光探針標記的時(shí)候,選用單通道;有多種熒光標記的時(shí)候使用多通道。單通道也可以檢測多熒光的標記和目的基因表達產(chǎn)物,因為一次只能檢測一種目的基因的擴增量,需多次擴增才能檢測完不同的目的基因片段的量。多通道利于做多重PCR,實(shí)現一次檢測多種目的基因的功能。

  實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀主要應用于臨床醫學(xué)檢測、生物醫藥研發(fā)、食品行業(yè)、科研院校等。

  實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀+實(shí)時(shí)熒光定量試劑+通用電腦+自動(dòng)分析軟件,構成PCR-DNA/RNA實(shí)時(shí)熒光定量檢測系統。

  實(shí)時(shí)熒光定量PCR的優(yōu)勢:

  熒光定量PCR儀比普通的PCR儀多了熒光信號采集系統和計算機分析處理系統,實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀主要是用來(lái)定量分析和確定基因轉錄水平的,而普通的PCR儀是做定性分析和擴增基因片段,定量PCR儀可以做普通PCR儀的工作,但是成本太高。

  樣品到達域值水平所經(jīng)歷的循環(huán)數稱(chēng)為Ct值(限制點(diǎn)的循環(huán)數)。域值應設定在使指數期的擴增效率為大,這樣可以獲得準確,可重復性的數據。如果同時(shí)擴增的還有標有相應濃度的標準品,線(xiàn)性回歸分析將產(chǎn)生一條標準曲線(xiàn),可以用來(lái)計算未知樣品的濃度。

  熒光定量PCR儀特點(diǎn):

  1.特異性強:引物和探針的“雙保險",避免檢測的假陽(yáng)性。

  2.靈敏度高:分析PCR產(chǎn)物的對數期,自動(dòng)化儀器收集熒光信號,避免了許多人為因素干擾。

  3.避免污染:全封閉反應,無(wú)須PCR后處理。

  4.實(shí)現定量:運用標準品獲得標準曲線(xiàn),結合Ct值進(jìn)行準確定量。

  5.高效低耗:可實(shí)現一管多檢。

  6.操作簡(jiǎn)便:在線(xiàn)式實(shí)時(shí)監測擴增結果,不必接觸有害物質(zhì)。

  7.快速:反應時(shí)間<1.5小時(shí)。

  三、PCR常見(jiàn)問(wèn)題匯總

  1.無(wú)擴增條帶

  (1)酶失活或在反應體系中未加入酶。TaqDNA聚合酶因保存或運輸不

  當而失活,往往通過(guò)更換新酶或用另一來(lái)源的酶以獲得滿(mǎn)意的結果。

  (2)模板含有雜質(zhì)。特別是對甲醛固定及石蠟包埋的組織常含甲酸,造成DNA脫嘌呤而影響PCR的結果。

  (3)變性溫度是否準確:PCR儀指示溫度與實(shí)際溫度是否相符,過(guò)高酶在前幾個(gè)循環(huán)就迅速失活;過(guò)低則模板變性不*。

  (4)反應系統中污染了蛋白酶及核酸酶,應在未加Taq酶以前,將反應

  體系95℃加熱5-10分鐘。

  (5)引物變質(zhì)失效。人工合成的引物是否正確。是否純化,或因儲存條件不當而失活。

  (6)引物錯誤。利用BLAST檢查引物特異性或重新設計引物。

  (7)DNA凝膠電泳時(shí)加入陽(yáng)性對照,確保不是DNA凝膠和PCR程序的問(wèn)題。

  2.PCR產(chǎn)物量過(guò)少

  (1)退火溫度不合適。以2度為梯度設計梯度PCR反應優(yōu)化退火溫度。

  (2)DNA模板量太少。增加DNA模板量。

  (3)PCR循環(huán)數不足。增加反應循環(huán)數。

  (4)引物量不足。增加體系中引物含量。

  (5)延伸時(shí)間太短。以1kb/分鐘的原則設置延伸時(shí)間。

  (6)變性時(shí)間過(guò)長(cháng)。變性時(shí)間過(guò)長(cháng)會(huì )導致DNA聚合酶失活。

  (7)DNA模板中存在抑制劑。確保DNA模板干凈

  3.擴增產(chǎn)物在凝膠中涂布或成片狀條帶彌散

  (1)酶量過(guò)高。減少酶量;酶的質(zhì)量差,調換另一來(lái)源的酶。

  (2)dNTP濃度過(guò)高。減少dNTP的濃度。

  (3)MgCl2濃度過(guò)高??蛇m當降低其用量。

  (4)模板量過(guò)多。質(zhì)粒DNA的用量應<50ng,而基因組DNA則應<200ng。

  (5)引物濃度不夠優(yōu)化。對引物進(jìn)行梯度稀釋重復PCR反應。

  (6)循環(huán)次數過(guò)多;增加模板量減少循環(huán)次數至30,縮短退火時(shí)間及延伸時(shí)間,或改用二種溫度的PCR循環(huán)。

  (7)退火溫度過(guò)低。

  (8)電泳體系有問(wèn)題:

 ?、倌z中緩沖液和電泳緩沖液濃度相差太大;

 ?、谀z沒(méi)有凝固好;

 ?、郗傊琴|(zhì)量差。

  (9)若為PCR試劑盒則可能:

 ?、儆捎谶\輸儲存不當引起試劑盒失效;

 ?、谠噭┖斜旧碣|(zhì)量有問(wèn)題,如引物選擇、循環(huán)參數等選擇不當。

  (10)降解的陳舊模板擴增也易產(chǎn)生涂布。

  4.擴增產(chǎn)物出現多條帶(雜帶)

  (1)引物用量偏大,引物的特異性不高。應調換引物或降低引物的使用量。

  (2)循環(huán)的次數過(guò)多。適當增加模板的量,減少循環(huán)次數。

  (3)酶的用量偏高或酶的質(zhì)量不好,應降低酶量或調換另一來(lái)源的酶。

  (4)退火溫度偏低,退火及延伸時(shí)間偏長(cháng)。應提高退火溫度,減少變性與延伸時(shí)間,也可采用二種溫度的PCR擴增。以2度為梯度設計梯度PCR反應優(yōu)化退火溫度。

  (5)樣品處理不當。

  (6)Mg2+濃度偏高,因適當調整Mg2+使用濃度。

  (7)若為PCR試劑盒,也可能時(shí)試劑盒本身質(zhì)量有問(wèn)題。

  (8)復制提前終止。使用非熱啟動(dòng)的聚合酶時(shí)常有發(fā)生。冰上準備

  反應體系或采用熱啟動(dòng)聚合酶。

  (9)反應緩沖液未*融化或未充分混勻。確保反應緩沖液融化完quan并*混勻。

  (10)引物特異性差。利用BLAST檢查引物特異性或重新設計引物。

  (11)引物量過(guò)多。減少反應體系中引物的用量。

  (12)模板量過(guò)多。質(zhì)粒DNA的用量應<50ng,而基因組DNA則應

  <200ng。

  (13)外源DNA污染。確保操作的潔凈。

  5.陰性對照出現條帶

  試劑,槍頭,工作臺污染。使用全新的試劑和槍頭,對工作臺進(jìn)行清

  潔。

  6.條帶大小與理論不符

  1)污染。使用全新的試劑和槍頭,對工作臺進(jìn)行清潔。

  2)模板或引物使用錯誤。更換引物和模板。

  3)基因亞型。對研究的基因進(jìn)行序列分析和BLAST研究。

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